Целесообразность ранней иммунокоррекции у новорождённых телят.
Выпуск:
ART 53209
Библиографическое описание статьи для цитирования:
Николаева
О.
Н. Целесообразность ранней иммунокоррекции у новорождённых телят. // Научно-методический электронный журнал «Концепт». –
2013. – Т. 3. – С.
1031–1035. – URL:
http://e-koncept.ru/2013/53209.htm.
Аннотация. Работа посвящена изучению показателей естественной резистентности и иммунологической реактивности новорожденных телят при использовании фитопробиотических композиций на основе лактобактерий и лекарственного растительного сырья. В результате проведенных исследований установлено, что применение фитопробиотических композиций на основе лактобактерий и лекарственного растительного сырья способствует повышению иммунного статуса организма телят, что необходимо для профилактики иммунодефицитных состояний.
Ключевые слова:
бактерицидная активность, лизоцим, фагоцитоз, т- в-лимфоциты, иммуноглобулины, телята, сельскохозяйственные животные, синбиотики
Текст статьи
Николаева Оксана Николаевна
Кандидат биологических наук, ассистент, Башкирский государственный аграрный университет, Уфа
oksanachistjakova@rambler.ru
ЦЕЛЕСООБРАЗНОСТЬ РАННЕЙ ИММУНОКОРРЕКЦИИ У НОВОРОЖДЁННЫХ ТЕЛЯТ
Работа посвященаизучениюпоказателей естественной резистентности и иммунологической реактивности новорожденных телят при использовании фитопробиотических композиций на основе лактобактерий и лекарственного растительного сырья. В результате проведенных исследований установлено, что применение фитопробиотических композиций на основе лактобактерий и лекарственного растительного сырья способствует повышению иммунного статуса организма телят, что необходимо для профилактики иммунодефицитных состояний.
БАКТЕРИЦИДНАЯ АКТИВНОСТЬ, ЛИЗОЦИМ, ФАГОЦИТОЗ Т, ВЛИМФОЦИТЫ, ИММУНОГЛОБУЛИНЫ А, М, G, ТЕЛЯТА, СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫЕ ЖИВОТНЫЕ, СИНБИОТИКИ
Проблема иммунокоррекции у молодняка сельскохозяйственных животных имеет большое значение ветеринарной науке и практике. Изучению естественной резистентности и иммунологической реактивности организма животных с учетом условий кормления, содержания и возрастных особенностей посвящено большое количество работ. В настоящее время установлено, что организм реактивен на любом этапе онтогенеза, однако проявление этой реактивностина разных стадиях неодинаково [1,2].Ранний постнатальный период является наиболее критическим и характеризуется состоянием иммунодефицита. В связи с вышеизложенным, изыскание эффективных методов коррекции иммунной системы у молоднякаявляется актуальной задачей.Целью нашей работы явилось изучение показателей естественной резистентности и иммунологической реактивности новорожденных телят при использовании фитопробиотических композиций на основе лактобактерий и лекарственного растительного сырья.Объектом исследования служили новорожденные телята, которых по принципу аналогов разделили на шесть групп (контрольная и пять опытных). Телята контрольной группы содержались в условиях принятой технологии содержания и кормления; вторая группа с кормом получала живую массу лактобактерий Lactobacteriumplantarum8PA3(жидкий пробиотик) с рождения в два этапа ежедневно по 20 мл в течение 10 дней с интервалом в 10 дней; телята третьей, четвертой, пятой, шестой групп –композиции фитопробиотиков с люцерной посевной, чистотелом большим, барбарисом обыкновенным и люцерной посевной с барбарисом обыкновенным [3] соответственно по вышеназванной схеме. Взятие проб крови для изучения показателей естественной резистентностипроводилось до начала опыта, затем на 10й, 20й, 30й дни от начала опыта. Бактерицидную активность сыворотки крови определяли по П. А. Емельяненко [4], лизоцимную активность по В. Г. Дорофейчуку [5]. Для исследования фагоцитарной активности нейтрофилов использовали частицы латекса размером 0,8 мкм [6].Поглотительную способность нейтрофилов оценивали по фагоцитарной активности, фагоцитарному числу и фагоцитарному индексу. Количество Т, В, NKлимфоцитов крови определяли по методу Пирса (1962) в модификации Н.Н. Гугушвили с соавт. [1]. Количественное определение иммуноглобулинов A, Mи Gв сыворотке крови телят проводили методом радиальной иммунодиффузии в геле по Манчини [7].Статистическую обработку цифровых данных проводили с использованием пакета статистического анализа для Microsoft Excel. Достоверность различий между группами по количественным признакам оценивали при помощи tкритерия Стьюдента. Различия считали статистически значимыми при Р<0,05.Для оценки естественной резистентности организма телят мы использовали тесты динамики бактерицидной и лизоцимной активности сыворотки крови и системы фагоцитоза. Как показали исследования, бактерицидная активность сыворотки крови новорожденных телят достаточно выражена (32,1±0,52% –33,5±0,6%). Применение фитопробиотика с люцерной (и фитопробиотика с барбарисом)способствовало увеличению показателя бактерицидной активности во все сроки исследований, более интенсивно, по сравнению с животными контрольной и второй групп. Так, к концу исследований бактерицидная активность сыворотки крови данных групп была выше контрольной –в 1,25 и в 1,27 раза; второй группы –в 1,09 и в 1,11 раза. Наиболее высокие показатели бактерицидной активности сыворотки крови регистрировались у телят четвертой и шестой групп. К концу опытного периода они были выше показателей контрольной и второй групп, соответственно, –в 1,3 и в 1,14 раза; в 1,35 и в 1,18 раза. Фагоцитарная активность сыворотки крови новорожденных телят контрольной и опытных групп находилась на уровне 32,63±0,50 –34,88±0,69%, фагоцитарное число на уровне 3,91±0,052 –4,89±0,055 и фагоцитарный индекс –2,21±0,040 –2,63±0,038. У телят третьейшестой опытных групп процент активно фагоцитирующих макрофагов значительно и достоверно превышал контрольные значения и показатели телят второй группы соответственно в –1,3 и в 1,18 раза; в 1,34 и в 1,24 раза; в 1,19 и в 1,2 раза; в 1,37 и в 1,26 раза(таблица 1). В фагоцитарном звене телят, получавших фитопробиотические композиции, наблюдалось динамичное увеличение фагоцитарного числа при достоверном увеличении фагоцитарного индекса. Эффективность киллинга частиц латекса к концу исследований у телят третьей группы была выше контрольных значений в 1,12 раза при увеличении индекса фагоцитоза в 1,49 раза; у телят четвертой группы –в 1,18 и в 1,6 раза; у телят пятой группы –в 1,18 и в 1,6 раза; у телят шестой группы –в 1,2 раза и в 1,7 раза(таблица 1). Лизоцимная активность сыворотки крови новорожденных телят контрольной и опытных групп также была достаточно выражена и находилась на уровне 21,9±0,39% 23,4±0,48%. Наиболее выражено к концу исследований (30й день) усиливалась лизоцимная активность в крови телят третьей, четвертой, пятой и шестой групп, превысив уровень лизоцима в крови контрольных животных в 1,07; 1,1; 1,08 и 1,14 раза, соответственно. Выявленная нами динамика в показателях клеточного и гуморального звеньев неспецифического иммунитета свидетельствуют о состоятельности неспецифического звена иммунной системы, и, в частности, нейтрофильных гранулоцитов при различного рода антигенных воздействиях (бактерии, вирусы, токсины) и повышении неспецифической резистентности организма телят в критические периоды постнатального развития.Изучение иммунологического статуса организма невозможно без учета клеточных и гуморальных факторов специфической реактивности. Применение экологически безопасных фитопробиотиков в комплексе с солями микроэлементов новорожденным телятам оказывало благоприятное воздействие на клеточный иммунитет. Как показали наши исследования, количество Тлимфоцитов в крови новорожденных телят находилосьна уровне 56,4±1,15% 57,3±1,33%. У телят третьей опытной группы происходило незначительное увеличение количества Тлимфоцитов. При применении фитопробиотиков в крови телят динамично увеличивалось количество Тлимфоцитов. Так, на 30й день исследований данный показатель в третьей группе был выше контрольных цифр –в 1,07 раза (на 4,1%); в четвертой группе в 1,08 раза (на 4,7%); в пятой группе в 1,08 раза (на 4,5%); в шестой группе в 1,09 раза (на 5,1%).
Таблица 1 Динамика фагоцитарной активности нейтрофилов телятГруппа
животныхДни исследованийФон102030Статистический показательM±mCv, %PM±mCv, %PM±mCv, %PM±mCv, %PФагоцитарная активность нейтрофилов, %Контрольная 32,63±0,504,3
34,75±0,625,0
37,25±0,564,2
40,88±0,815,6
2группа34,75±0,806,5
38,63±0,574,1*39,63±0,634,5*41,88±0,845,7**3 группа34,88±0,695,6
38,88±0,775,6***40,50±0,574,0***44,25±0,533,4***4 группа34,50±0,383,1
39,88±0,614,3***49,0±0,714,0***52,63±0,733,9***5 группа33,25±0,655,5
44,88±0,553,5***51,75±0,673,7***55,0±0,824,2***6 группа33,88±0,816,8
43,25±0,754,9***49,63±0,895,0***53,5±0,733,9***7 группа33,13±0,675,7
45,88±0,855,3***52,0±0,713,8**56,13±0,995,0***Фагоцитарное числоКонтрольная 4,83±0,074,0
5,25±0,0935,0
4,07±0,0735,0
4,82±0,0563,3
2 группа4,77±0,0593,5
5,03±0,073,9***5,08±0,0693,9***4,85±0,074,1
3 группа4,89±0,553,2
5,1±0,0784,3***5,1±0,0763,9***5,38±0,0532,8***4 группа4,71±0,0674,0
5,0±0,0533,0***5,12±0,0844,6***5,41±0,0954,9***5 группа4,41±0,0442,8
4,81±0,0694,1***5,21±0,105,7***5,71±0,105,1***6 группа4,26±0,0654,3
4,78±0,0593,5***5,13±0,0775,7***5,69±0,073,8***7 группа3,91±0,0523,7
4,56±0,063,7***5,1±0,0764,2***5,81±0,094,8***Фагоцитарный индексКонтрольная 2,29±0,0354,3
1,58±0,0315,6
1,69±0,0345,7
1,65±0,035,1
2 группа2,21±0,045,1
1,54±0,0264,8
2,0±0,0273,8***1,68±0,0244,1***3 группа2,5±0,0384,3
1,98±0,0253,6
2,38±0,0374,4**2,49±0,0354,0***4 группа2,63±0,0384,4
2,52±0,044,5**2,5±0,0262,9***2,47±0,0323,6***5 группа2,35±0,0384,5
2,56±0,0424,6**2,51±0,0353,9***2,63±0,0313,4***6 группа2,46±0,0384,3
2,49±0,044,5**2,56±0,0323,6***2,61±0,044,3***7 группа2,48±0,0374,2
2,56±0,0384,1*2,63±0,0373,9***2,78±0,0414,2***Примечание: * Р≤ 0,05; ** Р ≤ 0,01; *** Р ≤ 0,001.При изучении динамики Влимфоцитов нами установлено, что на 10й день исследований происходит падение их уровня относительно фоновых значений. Во второй группе уровень Влимфоцитов в последующие сроки опыта незначительно превышал контрольные показатели. У телят третьей, четвертой и пятой опытных групп к концу периода исследований количество Влимфоцитов было выше контрольной группы, соответственно, –в 1,07 (на 1,9%); в 1,12 (на 3,3%); в 1,1 (на 2,5%) раза. Максимальное значение количества Влимфоцитов регистрировалось в крови телят шестой опытной группы. Так, на 20й день количество Влимфоцитов было выше значения контрольной группы –в 1,1 раза (на 7,2%) и на 30й день –в 1,15 раза (на 3,0%).В начале исследований уровень NKкиллеров находился в пределах от 20,6±0,5% до 23,0±0,53%. В контрольной группе данный показатель имел тенденцию к недостоверному снижению к концу опытного периода. Содержание NKкиллеров в крови телят второй группы имело тенденцию к динамичному снижению. Несколько интенсивнее изменялось содержание NKкиллеров в крови телят третьей и пятой опытных групп. Уровень NKкиллеров был ниже к концу исследований показателей контрольной группы, соответственно, в 1,6 раза (на 6%) и в 1,8 раза (на 7,1%). Наименьший уровень NKкиллеров наблюдался у телят четвертой и шестой опытных групп, где был ниже контрольных цифр, соответственно, –в2,0 раза (на 8,1%) и в 2,3 раза (на 9,2%).Как известно, в процессе развития иммунной системы у телят в раннем постнатальном периоде жизни наблюдается несколько критических периодов. Второй возрастной иммунодефицит отмечается у телят на 714 день рожденияи, какотмечают многие исследователи, начинается с резкого снижения содержания иммуноглобулинов, особенно класса М, а затем иммуноглобулинов Gи в меньшей степени А. Гуморальная иммунная недостаточность компенсируется усилением клеточных факторов защиты –в крови увеличивается количество лимфоцитов, тимусных лейкоцитов и фагоцитарная активность крови. В крови новорожденных телят контрольной и опытных групп после выпойки молозива количество IgА было на уровне 0,6±0,013 мг/мл –0,72±0,008 мг/мл. В контрольной группе телят в течение всего периода динамика IgА оставалась нестабильной. Во второй группе животных произошло максимальное падение количества IgА на 10й день –в 2,4 раза (на 0,35 мг/мл), а уже к 20му дню происходило увеличение изучаемого показателя,что превысило данные контроля в 1,09 раза (на 0,03 мг/мл), а концу опыта –в 1,4 раза (на 0,15 мг/мл). У телят, получавших фитопробиотики, наблюдалась аналогичная динамика уменьшения IgА на 10й день исследований с последующим его увеличением по срокам опыта, которое, однако, фоновое значение по группам не превысило. В сыворотке крови новорожденных телят уровень IgMколебался от 1,7±0,018 мг/мл до 1,86±0,027 мг/мл. В контрольной группе телят количество иммуноглобулинов данного класса колебалось в течение всего опытного периода от 1,22±0,037 мг/мл до 1,83±0,035 мг/мл. У телят второй группы на 10й день исследований количество IgMбыло ниже фонового значения, в последующие сроки опыта наблюдалось динамичное повышение исследуемого показателя, однако даже к концу опытного периода фоновые значения по группам превышены не были. У телят третьейшестой опытных групп снижение IgMна 10й день исследований было минимальным –в 1,4 (на 0,59 мг/мл); в 1,4 (на 0,53 мг/мл); в 1,3 (на 0,39 мг/мл) и в 1,4 раза (на 0,56 мг/мл). В последующие сроки опыта происходило динамичное увеличение изучаемого показателя и к концу исследований уровень IgMбыл выше фоновых значений, соответственно по группам, –в 1,02 (на 0,04 мг/мл); в 1,06 (на 0,12 мг/мл); в 1,1 (на 0,18 мг/мл) и в 1,11раза (на 0,21 мг/мл). В крови новорожденных телят после выпойки молозива регистрировался высокий уровень IgG(от 8,83±0,13 мг/мл до 14,70±0,22 мг/мл). Во второй опытной группе на 10й день исследований уровень IgGбыл ниже своего фонового значения в 1,1 раза (на 1,52 мг/мл) и, несмотря на динамичное повышение по срокам опыта, к концу исследований его не превысил. У телят, получавших фитопробиотики, количество IgGбыло выше контрольной группы на 10й день, соответственно, в 1,05 (на 0,59 (мг/мл); в 1,02 (на 0,37 мг/мл); в 1,05 (на 0,67 мг/мл); в 1,03 (на 0,34 мг/мл); на 20й день, соответственно, в 1,3 (на 3,48 мг/мл); в 1,3 (на 3,7 мг/мл); в 1,3 (на 3,5 мг/мл); в 1,3 (на 3,5 мг/мл); на 30й день, соответственно, в 1,7 (на 6,2 мг/мл); в 1,7 (на 7,02 мг/мл);в 1,7 (на 6,3 мг/мл); в 1,8 (на 6,75 мг/мл).Таким образом, анализируя данную динамику клеточных и гуморальных факторов специфической резистентности телят раннего постнатального периода, можно сказать, что применение фитопробиотиков способствует повышениюфункциональной активности Ти Всистем иммунитета, поддерживает уровень гуморального иммунитета на достаточно высоком уровне длительное время как после прекращения приема молозива (у телят), , что говорит о иммунокоррегирующей способности вышеназванных препаратов. ЗАКЛЮЧЕНИЕ.Фитопробиотические композиции на основе лактобактерий и лекарственного растительного сырья восстанавливают иммунобиологический статус организма новорожденных телят. При этом по сравнению с данными контрольных животных:
активизируются факторы естественной резистентности (бактерицидная активность сыворотки возрастает в 1,25; 1,2; 1,17 и 1,35 раза; лизоцимная в 1,08; 1,1; 1,09 и 1,14 раза; процент фагоцитирующих нейтрофилов в –1,3; 1,34; 1,19 и 1,37 раза при увеличении фагоцитарного числа в 1,12; 1,18; 1,18 и 1,2 раза и фагоцитарного индекса в 1,5; 1,6; 1,58 и 1,7 раза;Фитопробиотические композиции на основе лактобактерий и лекарственного растительного сырья восстанавливают иммунобиологический статус организма новорожденных телят. При этом по сравнению с данными контрольных животных:
повышается уровень Ти Влимфоцитов –в 1,07 и 1,06 раза, в 1,08 и 1,1 раза, в 1,08 и в 1,09 раза, 1,1 и в 1,15 раза при одновременном снижении NKкиллеров;
количество иммуноглобулина Aвозрастает в 1,4; 1,5; 1,3 и 1,5, раза; иммуноглобулина М в 1,09; 1,12; 1,08 и в 1,18 раза; иммуноглобулина G
в 1,7 и 1,8 раза.
Ссылки на источники:1.Доми И.А. Особенности клеточного иммунитета телят // Актуал. пробл. ветеринарии в современных условиях: материалы Междунар. науч.произв. конф., посвящ. 60летию ГНУ Краснодарского НИВИ. –Краснодар, 2006. –С. 395–397.2.Иммунология: учебное пособие / П. А. Красочко [и др.]. –Мн. : Авэрсэв 2005. –128 с. 3.Назырова Н.Р. Влияние экстрактов лекарственных растений на биологическую активность штамма Lactobacterium plantarum 8PA3: автореф. дис. … канд. биол. наук. Уфа, 2007. 23 с.4.Емельяненко П.А. Иммунология животных в период внутриутробного развитии. М. : Агропромиздат, 1987. 213 с.5.Дорофейчук В. Г. Проблемы клинической микробиологии в неинфекционной клиник. М., 1983. 275 с.6.Потапова С.Г., Хрустиков В.С., Демидова Н.В., Козинец Г.И. Изучение поглотительной способности нейтрофилов крови с использованием инертных частиц латекса // Проблемы гематологии и переливания крови. Т. XXII. 1977. № 9. С. 5859.
7.Mancini G., Vaerman J.P., Carbonara A.A single radial diffusion method for the immunological quantitation of proteins. Protides of biological fluids. Amsterdam. The Netherlands: Elsevier. 1964.Р. 3703.
Nikolaeva Oksana Nikolaevna
THE EXPEDIENCY OF EARLY IMMUNOCORRECTION AT NEWBORN CALFS
The work is devoted to studying of indicators of natural resistance and immunological reactivity of newborn calfs when using phytoprobiotic compositions on the basis of lactobacilli and medicinal vegetable raw materials. As a result of the conducted researches it is established that application of phytoprobiotic compositions on the basis of lactobacilli and medicinal vegetable raw materials promotes increase of the immune status of an organism of calfs that is necessary for prevention of immunoscarce conditions.
ANTIBACTERIALACTIVITY, LYSOZYME, PHAGOCYTOSIS, T, BLYMPHOCYTES, IMMUNOGLOBULINS A, M, G, CALFS,AGRICULTURAL ANIMALS, SINBIOTICI
Кандидат биологических наук, ассистент, Башкирский государственный аграрный университет, Уфа
oksanachistjakova@rambler.ru
ЦЕЛЕСООБРАЗНОСТЬ РАННЕЙ ИММУНОКОРРЕКЦИИ У НОВОРОЖДЁННЫХ ТЕЛЯТ
Работа посвященаизучениюпоказателей естественной резистентности и иммунологической реактивности новорожденных телят при использовании фитопробиотических композиций на основе лактобактерий и лекарственного растительного сырья. В результате проведенных исследований установлено, что применение фитопробиотических композиций на основе лактобактерий и лекарственного растительного сырья способствует повышению иммунного статуса организма телят, что необходимо для профилактики иммунодефицитных состояний.
БАКТЕРИЦИДНАЯ АКТИВНОСТЬ, ЛИЗОЦИМ, ФАГОЦИТОЗ Т, ВЛИМФОЦИТЫ, ИММУНОГЛОБУЛИНЫ А, М, G, ТЕЛЯТА, СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫЕ ЖИВОТНЫЕ, СИНБИОТИКИ
Проблема иммунокоррекции у молодняка сельскохозяйственных животных имеет большое значение ветеринарной науке и практике. Изучению естественной резистентности и иммунологической реактивности организма животных с учетом условий кормления, содержания и возрастных особенностей посвящено большое количество работ. В настоящее время установлено, что организм реактивен на любом этапе онтогенеза, однако проявление этой реактивностина разных стадиях неодинаково [1,2].Ранний постнатальный период является наиболее критическим и характеризуется состоянием иммунодефицита. В связи с вышеизложенным, изыскание эффективных методов коррекции иммунной системы у молоднякаявляется актуальной задачей.Целью нашей работы явилось изучение показателей естественной резистентности и иммунологической реактивности новорожденных телят при использовании фитопробиотических композиций на основе лактобактерий и лекарственного растительного сырья.Объектом исследования служили новорожденные телята, которых по принципу аналогов разделили на шесть групп (контрольная и пять опытных). Телята контрольной группы содержались в условиях принятой технологии содержания и кормления; вторая группа с кормом получала живую массу лактобактерий Lactobacteriumplantarum8PA3(жидкий пробиотик) с рождения в два этапа ежедневно по 20 мл в течение 10 дней с интервалом в 10 дней; телята третьей, четвертой, пятой, шестой групп –композиции фитопробиотиков с люцерной посевной, чистотелом большим, барбарисом обыкновенным и люцерной посевной с барбарисом обыкновенным [3] соответственно по вышеназванной схеме. Взятие проб крови для изучения показателей естественной резистентностипроводилось до начала опыта, затем на 10й, 20й, 30й дни от начала опыта. Бактерицидную активность сыворотки крови определяли по П. А. Емельяненко [4], лизоцимную активность по В. Г. Дорофейчуку [5]. Для исследования фагоцитарной активности нейтрофилов использовали частицы латекса размером 0,8 мкм [6].Поглотительную способность нейтрофилов оценивали по фагоцитарной активности, фагоцитарному числу и фагоцитарному индексу. Количество Т, В, NKлимфоцитов крови определяли по методу Пирса (1962) в модификации Н.Н. Гугушвили с соавт. [1]. Количественное определение иммуноглобулинов A, Mи Gв сыворотке крови телят проводили методом радиальной иммунодиффузии в геле по Манчини [7].Статистическую обработку цифровых данных проводили с использованием пакета статистического анализа для Microsoft Excel. Достоверность различий между группами по количественным признакам оценивали при помощи tкритерия Стьюдента. Различия считали статистически значимыми при Р<0,05.Для оценки естественной резистентности организма телят мы использовали тесты динамики бактерицидной и лизоцимной активности сыворотки крови и системы фагоцитоза. Как показали исследования, бактерицидная активность сыворотки крови новорожденных телят достаточно выражена (32,1±0,52% –33,5±0,6%). Применение фитопробиотика с люцерной (и фитопробиотика с барбарисом)способствовало увеличению показателя бактерицидной активности во все сроки исследований, более интенсивно, по сравнению с животными контрольной и второй групп. Так, к концу исследований бактерицидная активность сыворотки крови данных групп была выше контрольной –в 1,25 и в 1,27 раза; второй группы –в 1,09 и в 1,11 раза. Наиболее высокие показатели бактерицидной активности сыворотки крови регистрировались у телят четвертой и шестой групп. К концу опытного периода они были выше показателей контрольной и второй групп, соответственно, –в 1,3 и в 1,14 раза; в 1,35 и в 1,18 раза. Фагоцитарная активность сыворотки крови новорожденных телят контрольной и опытных групп находилась на уровне 32,63±0,50 –34,88±0,69%, фагоцитарное число на уровне 3,91±0,052 –4,89±0,055 и фагоцитарный индекс –2,21±0,040 –2,63±0,038. У телят третьейшестой опытных групп процент активно фагоцитирующих макрофагов значительно и достоверно превышал контрольные значения и показатели телят второй группы соответственно в –1,3 и в 1,18 раза; в 1,34 и в 1,24 раза; в 1,19 и в 1,2 раза; в 1,37 и в 1,26 раза(таблица 1). В фагоцитарном звене телят, получавших фитопробиотические композиции, наблюдалось динамичное увеличение фагоцитарного числа при достоверном увеличении фагоцитарного индекса. Эффективность киллинга частиц латекса к концу исследований у телят третьей группы была выше контрольных значений в 1,12 раза при увеличении индекса фагоцитоза в 1,49 раза; у телят четвертой группы –в 1,18 и в 1,6 раза; у телят пятой группы –в 1,18 и в 1,6 раза; у телят шестой группы –в 1,2 раза и в 1,7 раза(таблица 1). Лизоцимная активность сыворотки крови новорожденных телят контрольной и опытных групп также была достаточно выражена и находилась на уровне 21,9±0,39% 23,4±0,48%. Наиболее выражено к концу исследований (30й день) усиливалась лизоцимная активность в крови телят третьей, четвертой, пятой и шестой групп, превысив уровень лизоцима в крови контрольных животных в 1,07; 1,1; 1,08 и 1,14 раза, соответственно. Выявленная нами динамика в показателях клеточного и гуморального звеньев неспецифического иммунитета свидетельствуют о состоятельности неспецифического звена иммунной системы, и, в частности, нейтрофильных гранулоцитов при различного рода антигенных воздействиях (бактерии, вирусы, токсины) и повышении неспецифической резистентности организма телят в критические периоды постнатального развития.Изучение иммунологического статуса организма невозможно без учета клеточных и гуморальных факторов специфической реактивности. Применение экологически безопасных фитопробиотиков в комплексе с солями микроэлементов новорожденным телятам оказывало благоприятное воздействие на клеточный иммунитет. Как показали наши исследования, количество Тлимфоцитов в крови новорожденных телят находилосьна уровне 56,4±1,15% 57,3±1,33%. У телят третьей опытной группы происходило незначительное увеличение количества Тлимфоцитов. При применении фитопробиотиков в крови телят динамично увеличивалось количество Тлимфоцитов. Так, на 30й день исследований данный показатель в третьей группе был выше контрольных цифр –в 1,07 раза (на 4,1%); в четвертой группе в 1,08 раза (на 4,7%); в пятой группе в 1,08 раза (на 4,5%); в шестой группе в 1,09 раза (на 5,1%).
Таблица 1 Динамика фагоцитарной активности нейтрофилов телятГруппа
животныхДни исследованийФон102030Статистический показательM±mCv, %PM±mCv, %PM±mCv, %PM±mCv, %PФагоцитарная активность нейтрофилов, %Контрольная 32,63±0,504,3
34,75±0,625,0
37,25±0,564,2
40,88±0,815,6
2группа34,75±0,806,5
38,63±0,574,1*39,63±0,634,5*41,88±0,845,7**3 группа34,88±0,695,6
38,88±0,775,6***40,50±0,574,0***44,25±0,533,4***4 группа34,50±0,383,1
39,88±0,614,3***49,0±0,714,0***52,63±0,733,9***5 группа33,25±0,655,5
44,88±0,553,5***51,75±0,673,7***55,0±0,824,2***6 группа33,88±0,816,8
43,25±0,754,9***49,63±0,895,0***53,5±0,733,9***7 группа33,13±0,675,7
45,88±0,855,3***52,0±0,713,8**56,13±0,995,0***Фагоцитарное числоКонтрольная 4,83±0,074,0
5,25±0,0935,0
4,07±0,0735,0
4,82±0,0563,3
2 группа4,77±0,0593,5
5,03±0,073,9***5,08±0,0693,9***4,85±0,074,1
3 группа4,89±0,553,2
5,1±0,0784,3***5,1±0,0763,9***5,38±0,0532,8***4 группа4,71±0,0674,0
5,0±0,0533,0***5,12±0,0844,6***5,41±0,0954,9***5 группа4,41±0,0442,8
4,81±0,0694,1***5,21±0,105,7***5,71±0,105,1***6 группа4,26±0,0654,3
4,78±0,0593,5***5,13±0,0775,7***5,69±0,073,8***7 группа3,91±0,0523,7
4,56±0,063,7***5,1±0,0764,2***5,81±0,094,8***Фагоцитарный индексКонтрольная 2,29±0,0354,3
1,58±0,0315,6
1,69±0,0345,7
1,65±0,035,1
2 группа2,21±0,045,1
1,54±0,0264,8
2,0±0,0273,8***1,68±0,0244,1***3 группа2,5±0,0384,3
1,98±0,0253,6
2,38±0,0374,4**2,49±0,0354,0***4 группа2,63±0,0384,4
2,52±0,044,5**2,5±0,0262,9***2,47±0,0323,6***5 группа2,35±0,0384,5
2,56±0,0424,6**2,51±0,0353,9***2,63±0,0313,4***6 группа2,46±0,0384,3
2,49±0,044,5**2,56±0,0323,6***2,61±0,044,3***7 группа2,48±0,0374,2
2,56±0,0384,1*2,63±0,0373,9***2,78±0,0414,2***Примечание: * Р≤ 0,05; ** Р ≤ 0,01; *** Р ≤ 0,001.При изучении динамики Влимфоцитов нами установлено, что на 10й день исследований происходит падение их уровня относительно фоновых значений. Во второй группе уровень Влимфоцитов в последующие сроки опыта незначительно превышал контрольные показатели. У телят третьей, четвертой и пятой опытных групп к концу периода исследований количество Влимфоцитов было выше контрольной группы, соответственно, –в 1,07 (на 1,9%); в 1,12 (на 3,3%); в 1,1 (на 2,5%) раза. Максимальное значение количества Влимфоцитов регистрировалось в крови телят шестой опытной группы. Так, на 20й день количество Влимфоцитов было выше значения контрольной группы –в 1,1 раза (на 7,2%) и на 30й день –в 1,15 раза (на 3,0%).В начале исследований уровень NKкиллеров находился в пределах от 20,6±0,5% до 23,0±0,53%. В контрольной группе данный показатель имел тенденцию к недостоверному снижению к концу опытного периода. Содержание NKкиллеров в крови телят второй группы имело тенденцию к динамичному снижению. Несколько интенсивнее изменялось содержание NKкиллеров в крови телят третьей и пятой опытных групп. Уровень NKкиллеров был ниже к концу исследований показателей контрольной группы, соответственно, в 1,6 раза (на 6%) и в 1,8 раза (на 7,1%). Наименьший уровень NKкиллеров наблюдался у телят четвертой и шестой опытных групп, где был ниже контрольных цифр, соответственно, –в2,0 раза (на 8,1%) и в 2,3 раза (на 9,2%).Как известно, в процессе развития иммунной системы у телят в раннем постнатальном периоде жизни наблюдается несколько критических периодов. Второй возрастной иммунодефицит отмечается у телят на 714 день рожденияи, какотмечают многие исследователи, начинается с резкого снижения содержания иммуноглобулинов, особенно класса М, а затем иммуноглобулинов Gи в меньшей степени А. Гуморальная иммунная недостаточность компенсируется усилением клеточных факторов защиты –в крови увеличивается количество лимфоцитов, тимусных лейкоцитов и фагоцитарная активность крови. В крови новорожденных телят контрольной и опытных групп после выпойки молозива количество IgА было на уровне 0,6±0,013 мг/мл –0,72±0,008 мг/мл. В контрольной группе телят в течение всего периода динамика IgА оставалась нестабильной. Во второй группе животных произошло максимальное падение количества IgА на 10й день –в 2,4 раза (на 0,35 мг/мл), а уже к 20му дню происходило увеличение изучаемого показателя,что превысило данные контроля в 1,09 раза (на 0,03 мг/мл), а концу опыта –в 1,4 раза (на 0,15 мг/мл). У телят, получавших фитопробиотики, наблюдалась аналогичная динамика уменьшения IgА на 10й день исследований с последующим его увеличением по срокам опыта, которое, однако, фоновое значение по группам не превысило. В сыворотке крови новорожденных телят уровень IgMколебался от 1,7±0,018 мг/мл до 1,86±0,027 мг/мл. В контрольной группе телят количество иммуноглобулинов данного класса колебалось в течение всего опытного периода от 1,22±0,037 мг/мл до 1,83±0,035 мг/мл. У телят второй группы на 10й день исследований количество IgMбыло ниже фонового значения, в последующие сроки опыта наблюдалось динамичное повышение исследуемого показателя, однако даже к концу опытного периода фоновые значения по группам превышены не были. У телят третьейшестой опытных групп снижение IgMна 10й день исследований было минимальным –в 1,4 (на 0,59 мг/мл); в 1,4 (на 0,53 мг/мл); в 1,3 (на 0,39 мг/мл) и в 1,4 раза (на 0,56 мг/мл). В последующие сроки опыта происходило динамичное увеличение изучаемого показателя и к концу исследований уровень IgMбыл выше фоновых значений, соответственно по группам, –в 1,02 (на 0,04 мг/мл); в 1,06 (на 0,12 мг/мл); в 1,1 (на 0,18 мг/мл) и в 1,11раза (на 0,21 мг/мл). В крови новорожденных телят после выпойки молозива регистрировался высокий уровень IgG(от 8,83±0,13 мг/мл до 14,70±0,22 мг/мл). Во второй опытной группе на 10й день исследований уровень IgGбыл ниже своего фонового значения в 1,1 раза (на 1,52 мг/мл) и, несмотря на динамичное повышение по срокам опыта, к концу исследований его не превысил. У телят, получавших фитопробиотики, количество IgGбыло выше контрольной группы на 10й день, соответственно, в 1,05 (на 0,59 (мг/мл); в 1,02 (на 0,37 мг/мл); в 1,05 (на 0,67 мг/мл); в 1,03 (на 0,34 мг/мл); на 20й день, соответственно, в 1,3 (на 3,48 мг/мл); в 1,3 (на 3,7 мг/мл); в 1,3 (на 3,5 мг/мл); в 1,3 (на 3,5 мг/мл); на 30й день, соответственно, в 1,7 (на 6,2 мг/мл); в 1,7 (на 7,02 мг/мл);в 1,7 (на 6,3 мг/мл); в 1,8 (на 6,75 мг/мл).Таким образом, анализируя данную динамику клеточных и гуморальных факторов специфической резистентности телят раннего постнатального периода, можно сказать, что применение фитопробиотиков способствует повышениюфункциональной активности Ти Всистем иммунитета, поддерживает уровень гуморального иммунитета на достаточно высоком уровне длительное время как после прекращения приема молозива (у телят), , что говорит о иммунокоррегирующей способности вышеназванных препаратов. ЗАКЛЮЧЕНИЕ.Фитопробиотические композиции на основе лактобактерий и лекарственного растительного сырья восстанавливают иммунобиологический статус организма новорожденных телят. При этом по сравнению с данными контрольных животных:
активизируются факторы естественной резистентности (бактерицидная активность сыворотки возрастает в 1,25; 1,2; 1,17 и 1,35 раза; лизоцимная в 1,08; 1,1; 1,09 и 1,14 раза; процент фагоцитирующих нейтрофилов в –1,3; 1,34; 1,19 и 1,37 раза при увеличении фагоцитарного числа в 1,12; 1,18; 1,18 и 1,2 раза и фагоцитарного индекса в 1,5; 1,6; 1,58 и 1,7 раза;Фитопробиотические композиции на основе лактобактерий и лекарственного растительного сырья восстанавливают иммунобиологический статус организма новорожденных телят. При этом по сравнению с данными контрольных животных:
повышается уровень Ти Влимфоцитов –в 1,07 и 1,06 раза, в 1,08 и 1,1 раза, в 1,08 и в 1,09 раза, 1,1 и в 1,15 раза при одновременном снижении NKкиллеров;
количество иммуноглобулина Aвозрастает в 1,4; 1,5; 1,3 и 1,5, раза; иммуноглобулина М в 1,09; 1,12; 1,08 и в 1,18 раза; иммуноглобулина G
в 1,7 и 1,8 раза.
Ссылки на источники:1.Доми И.А. Особенности клеточного иммунитета телят // Актуал. пробл. ветеринарии в современных условиях: материалы Междунар. науч.произв. конф., посвящ. 60летию ГНУ Краснодарского НИВИ. –Краснодар, 2006. –С. 395–397.2.Иммунология: учебное пособие / П. А. Красочко [и др.]. –Мн. : Авэрсэв 2005. –128 с. 3.Назырова Н.Р. Влияние экстрактов лекарственных растений на биологическую активность штамма Lactobacterium plantarum 8PA3: автореф. дис. … канд. биол. наук. Уфа, 2007. 23 с.4.Емельяненко П.А. Иммунология животных в период внутриутробного развитии. М. : Агропромиздат, 1987. 213 с.5.Дорофейчук В. Г. Проблемы клинической микробиологии в неинфекционной клиник. М., 1983. 275 с.6.Потапова С.Г., Хрустиков В.С., Демидова Н.В., Козинец Г.И. Изучение поглотительной способности нейтрофилов крови с использованием инертных частиц латекса // Проблемы гематологии и переливания крови. Т. XXII. 1977. № 9. С. 5859.
7.Mancini G., Vaerman J.P., Carbonara A.A single radial diffusion method for the immunological quantitation of proteins. Protides of biological fluids. Amsterdam. The Netherlands: Elsevier. 1964.Р. 3703.
Nikolaeva Oksana Nikolaevna
THE EXPEDIENCY OF EARLY IMMUNOCORRECTION AT NEWBORN CALFS
The work is devoted to studying of indicators of natural resistance and immunological reactivity of newborn calfs when using phytoprobiotic compositions on the basis of lactobacilli and medicinal vegetable raw materials. As a result of the conducted researches it is established that application of phytoprobiotic compositions on the basis of lactobacilli and medicinal vegetable raw materials promotes increase of the immune status of an organism of calfs that is necessary for prevention of immunoscarce conditions.
ANTIBACTERIALACTIVITY, LYSOZYME, PHAGOCYTOSIS, T, BLYMPHOCYTES, IMMUNOGLOBULINS A, M, G, CALFS,AGRICULTURAL ANIMALS, SINBIOTICI